Plant secondary metabolites : antiparasitic effects and their role in ruminant production systems, Proc. Nutr. Soc, vol.63, pp.631-639, 2004. ,
, Parasitisme digestif des petits ruminants dans les Antilles françaises, vol.10, pp.79-89, 1997.
Evaluation of nutraceutical properties of Leucaena leucocephala leaves pellets fed to Creole kids, ISNH conference 2-6, 2018. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02958333
Anthelmintinc resistance in sheep and goats farms on Peninsular Malaysia, Vet. Parasitol, vol.82, pp.305-310, 1999. ,
Cinétique comparée des phénomènes physiopathologiques et de la réponse immune chez des ovins résistants (Martinik Black Belly) ou sensibles (Lacaune) au cours d'une primoinfestation par haemonchus contortus . Thèse d'exercice, Médecine vétérinaire, vol.157, 2011. ,
Consequences nutritionnelles du parasitme gastro-intestinal chez les ruminants, Nutrition des Ruminants Domestiques. INRA, pp.853-870, 1995. ,
Evolution des composés phénoliques et des caroténoïdes totaux au cours de la maturation de deux variétés de datte communes Tantboucht et Hamraia, Mémoire d'ingéniorat en agronomie, 2005. ,
Procédure de collecte totale de fèces de petits ruminants, Cahier des Techniques de l'INRA, 96 (Numéro Spécial : Données de la recherche, pp.1-11, 2018. ,
Dairy science and health in the tropics: challenges and opportunities for the next decades, Trop. Anim. Health Prod, vol.51, pp.1009-1017, 2019. ,
Direct and indirect effects of bioactive tannin-rich tropical and temperate legumes against nematode infections, Vet. Parasitol, vol.186, pp.18-27, 2012. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02650791
Tannin containing legumes as a model for nutraceuticals against digestive parasites in livestock, Vet. Parasitol, vol.212, pp.5-17, 2015. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02637337
A new method for culture of larvae used in diagnosis of ruminant gastrointestinal strongylosis: Comparison with faecal cultures, Can. J. Comp. Med, vol.48, pp.63-71, 1984. ,
, Inventaire National du Patrimoine Naturel (INPN)
Tannin with anthelmintic properties, ACIAR Proceedings of the International Workshop on Tannin in Livestock and Human Nutrition, pp.140-154, 2000. ,
An inconvenient truth: Global worming and anthelmintic resistance, Vet. Parasitol, vol.186, pp.70-78, 2012. ,
Various condensed tannins from tropical plants as potential multi-purpose nutraceutic in ruminant feed, Advances in Animal Biosciences, pp.381-381, 2018. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02734764
Effect of cassava (Manihot esculenta) foliage on nutrition, parasite infection and growth of lambs, Small Ruminant Res, vol.93, pp.10-18, 2010. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02661655
Nutraceutical properties of Leucaena leucocephala, Manihot esculenta, Cajanus cajan in goat kids infected with Haemonchus contortus, 2020. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02957132
Unravelling the conundrum of tannins in animal nutrition and health, J. Sci. Food Agric, vol.86, pp.2010-2037, 2006. ,
Anthelmintic Activities against Haemonchus contortus or Trichostrongylus colubriformis from Small Ruminants Are Influenced by Structural Features of Condensed Tannins, J. Agric. Food Chem, vol.63, pp.6346-6354, 2015. ,
URL : https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-02637527
Cinétique comparée des phénomènes physiopathologiques et de la réponse immune chez des ovins résistants (Martinik Black Belly) ou sensibles (Lacaune) au cours d'une primoinfestation par haemonchus contortus . Thèse d'exercice, Médecine vétérinaire, p.157, 2011. ,
, Si les prélèvements fécaux ont été fait avec microlax ?, laver les fèces sous un filet d'eau pour éliminer le microlax ?
, Placer des fèces fraîches dans une boîte de Petri identifiée (date prélèvement, lot, boîte?), sans tasser, à l'ombre et à température ambiante (+/-25°C), pendant 7 (minimum) à 10 jours (maximum)
,
, Placer les fèces dans un panier plat à mailles fines, en couche mince (3 cm), sans tasser, et appliquer les mêmes règles que ci-dessus
, Récolte -extraction des L3
, ajustement à l'entonnoir) Garnir la passoire d'une feuille de papier essuie-main (une seule épaisseur de papier) Placer l'appareil sur son support
, Enlever l'eau à la trompe, jusqu'en haut de la partie conique du tube, sans perturber le culot de L3. Détacher le tube de l'entonnoir et le fermer avec un bouchon
une production massive de larves: -Extraction des larves Placer le panier plat à mailles fines contenant les fèces dans un récipient étanche plus grand ,
Récupérer l'eau contenant les L3 en rinçant soigneusement, puis sédimenter dans un Baermann si le volume n'est pas excessif (en filtrant avec une feuille d'essuie-main s'il y a des particules en suspension) ,
, Si le volume de liquide est trop important, le récupérer dan un contenant haut et étroit (bécher, bouteille, éprouvette?) et laisser décanter plusieurs heures. Réduire le volume à la trompe à vide pour pouvoir sédimenter au Baermann
, Si nécessaire, le montage de Baermann habituel peut être remplacé par un grand entonnoir muni d'un tube Falcon? de 50 ml
, Si les L3 récupérées doivent servir à des infestations expérimentales, il est recommandé de les stocker ensuite au frais